| CAS No.: | Culture Medium |
|---|---|
| Fórmula: | Culture Media |
| EINECS: | Chromogenic Vibro Agar |
| Classificação: | Reagentes Bioquímicos |
| Grau: | Br |
| uso específico: | Para propósito biológico, Para microbiológica, Grau Técnico, Use Pratical |
Fornecedores com licênças comerciais verificadas
Fornecedor Auditado CRM008 Vibrio cromogénico médio
(Vibrio Agar cromogénico)
Usos:
Para isolamento e identificação de Vibrio, especialmente para parahaemolyticus Vibrio em produtos aquáticos e amostras de intoxicação alimentar. (GB/T4789,7-2008, SN0173-2010 E SN1022-2010)
Princípio:
Peptona e fermento extracto pó para fornecer uma fonte de azoto, vitaminas, aminoácidos como fonte de carbono; açúcares fermentáveis de sacarose; a maioria dos agentes não bacteriostáticos inibem as bactérias Vibrio, o cloreto de sódio pode ser mantido a uma pressão osmótica equilibrada; o meio ágar coagulante; Mistura de pigmentos com Vibrio cholerae e Vibrio vulnificus enzima correspondente reacção específica parahaemolyticus, hidrólise do substrato, libertação dos grupos de cores para a produção de colónias magenta (adjuntos na pastilha amarela pálida Vibrio parahaemolyticus) e colónias verde-azul-verde (Vibrio cholerae e Vibrio vulnificus).
Formulação (por litro):
Peptona: 18,8 g.
Pó de extracto de levedura: 5 g
Sacarose: 20g
Cloreto de sódio: 10 g
Agente bacteriostático: 1,5g
Ágar-ágar: 13 g.
Mistura de pigmento: 3g
PH final 9.0 ± 0.2
Como utilizar:
1. Recolher 71,3g de pó dissolvido em 1000ml de água destilada ou purificada, em função da proporção do produto amplificado ou diminuído. Aquecido a ferver, mexendo até completamente dissolvido, sem autoclavagem, arrefecido até cerca de 50, verta a caixa Petri estéril.
2, recolher 25 g (ml) de amostra de ensaio com procedimento asseptico, adicionar 3% de cloreto de sódio de água alcalina peptona 225 ml, com um homogeneizador de lâmina rotativa a 8 000 r/min homogeneizado 1 min, ou homogeneizador de lamelas 2 min, Ou pulsado com processador de amostras homogéneo de pulsador durante 30 segundos para preparar uma diluição uniforme de 1:10. Se não houver homogeneizador, as amostras foram colocadas numa argamassa estéril e moídos e, em seguida, colocadas em 500 ml de recipiente esterilizado, adicionar 225 ML3% de cloreto de sódio, água alcalina peptona e agitadas cuidadosamente.
3, enriquecimento: 1:10 diluição acima foi cultivada em 36 ± 1 8 ~ 18h.
4, a separação
Na ansa de inoculação de caldo de enriquecimento, tomar parte, na separação de cor Vibrio, cruzou a placa e incubou-se a 36 ± 1 18 ~ 24 h.
5, confirmar ainda os testes presuntivos Vibrio parahaemolyticus e Vibrio, outros testes validados, como a oxidase, a coloração de Gram, a identificação bioquímica.
Controlo de qualidade:
Este produto parece amarelo claro após a placa de fluidez, estas estirpes foram inoculadas após 36 ± 1 cultura durante 18-24 horas de crescimento no quadro seguinte:
Característica da situação de crescimento do inóculo com o nome bacteriano (UFC/Plate)
Vibrio parahaemolyticus ATCC17802 30-300 bom vermelho
VBO Vibrio cholerae non-01 30-300 bom verde-azul
Alginolyticus ATCC33787 ______ boa cor
Escherichia coli ATCC25922 5000 sem crescimento ___
Nota: O teste adicional para a identificação final da necessidade de ser feito.
Aspecto:
Meios desidratados da cultura: Pó amarelo claro com liquidez.
Boa preparação tablet: Plástico amarelo.
Condições de armazenamento e validade:
Meios desidratados de Cultura: 10-30, a vida útil de dois anos.
Placa média preparada: 2-8, Poupe até duas semanas.
Referências:
1. GB/T4789,7-2008 normas nacionais de higiene alimentar exame microbiológico do Vibrio parahaemolyticus na República Popular da China
2. SN0173-2010 República Popular da China Inspecção de entrada e de saída e normas da indústria de exportação de quarentena Vibrio parahaemolyticus em inspecção alimentar
3. SN1022-2010 Inspecção de entrada e de saída da República Popular da China e inspecção alimentar de exportação padrão da indústria de quarentena em Vibrio cholerae
1. Oferecer uma amostra gratuita para testes.
2. Equipa de I&D para prestar apoio técnico.
3. Fornecer embalagens, rotular personalização OEM.
P1:
Por vezes, a cor dos meios de cultura desidratados entre lotes tem diferenças subtis. Isto afectaria os resultados dos testes?
A1: A fonte e as condições de armazenamento da matéria-prima são diferentes, pelo que pode haver uma ligeira diferença de cor, que é um fenómeno normal. Os produtos da nossa empresa têm de ser submetidos a uma inspecção rigorosa e a uma verificação da biologia sensorial antes da venda, para garantir que todas as características dos indicadores do produto estão dentro do padrão empresarial, na medida do permitido, não afectam os resultados dos testes.
P2:
Depois de verter o meio líquido na placa, o meio parece difícil de coagular ou o tempo de coagulação é mais longo, é algum problema com a qualidade do produto?
A2: O motivo pode ser:
A hidratação necessária no processo de preparação não foi completamente feita, ou seja , a água destilada não ferve o suficiente para dissolver o ágar. Uma vez que a proporção de ágar-ágar se estabiliza facilmente no fundo do frasco, se não for totalmente abalada após a esterilização a alta temperatura, irá levar a um conteúdo desigual do gene da cultura de ágar-ágar superior e a uma configuração difícil.
P3:
Por que razão algumas colónias de E.coli de cor média cromogénica não são apresentadas acima, mas também confirmadas através de testes bioquímicos para E.coli (falso negativo)?
A3: O meio CROMOGÉNICO baseia-se no princípio da enzima específica da E. coli e do seu desenho, 94% da E. coli têm enzima β-glucuronidase, com papel do meio de substrato enzimático cromogénico na formação de colónias azul-verdes. E cerca de 4% da E. coli não tem enzimas β-glucuronidase, incluindo a preocupação O157:H7 Escherichia coli. Por conseguinte, estas E. coli não podem ser apresentadas na cor característica do meio cromogénico E. coli, é possível que sejam falsas negativas no meio cromogénico. Entretanto, o meio tradicional do mesmo não pode evitar o problema de falsos negativos, como: Não há gás ou intolerância lenta à lactose, pode também causar 44.5 falsos negativos no meio convencional. Para esta pequena parte da E. coli pode ser detectada usando outros métodos.
P4:
Durante a cultura anaeróbica ou micro-aeróbica, é necessário remover o saco de gás da embalagem? Como utilizar o indicador de oxigénio?
A4: Durante a cultura anaeróbica ou microaeróbica, o uso do método de gaseificação deve ser feito de acordo com as instruções do fabricante. Retire a bolsa de papel da embalagem de plástico, mas não corte a bolsa de papel. Rasgou a embalagem exterior do indicador de oxigénio e, em seguida, pode ser utilizado.
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